中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准
食 品 卫 生 微 生 物 学 检 验 GB 4789.12-94
肉 毒 梭 菌 及 肉 毒 毒 素 检 验
代替GB 4789.12-84
Microbiological examination of food hygiene
Examination of Clostridium botulinum and botulinus toxin
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1 主题内容与适用范围
本标准规定了肉毒梭菌及肉毒毒素的检验方法。
本标准适用于食品和食物中毒样品中肉毒梭菌及肉毒毒素的检验。
2 引用标准
GB 4789.28 食品卫生微生物学检验 染色法、培养基和试剂
3 设备和材料
3.1 离心机及离心管。
3.2 研钵及细沙。
3.3 温箱:30℃.35℃,37℃。
3.4 显微镜。
3.5 厌氧培养装置:常温催化除氧式或焦性没石子酸除氧式。
3.6 吸管:1mL,10mL。
3.7 注射器:1mL。
3.8 平皿。
3.9 接种环。
3.10 载玻片。
3.11 小白鼠。
4 培养基和试剂
4.1 庖肉培养基:GB 4789.28中4.67。
4.2 卵黄琼脂培养基:GB 4789.28中4.68。
4.3 明胶磷酸盐缓冲液:GB 4789.28中3.23。
4.4 肉毒分型抗毒诊断血清。
4.5 胰酶:活力1:250。
4.6 革兰氏染色液:GB 4789.28中2.2。
5 检验程序
肉毒梭菌及肉毒毒素检验程序如下:
┌─────┐
│1毒素检测│
└──┬──┘
┌───────┴───┐
┌──┴─┐ ┌───┴───┐
│毒素检测│ │增菌、产菌培养│
└──┬─┘ │30℃，5d │
┌─┴─┐ └──┬────┘
│ 报告 │ ┌─┴────┐
│ │ │观察生任性 │
└───┘ ┌───┤状、染色锐检│
│ └─┬────┘
┌───┴┐┌───┴──┐
│毒素检测├┤增萌产毒培养│
└──┬─┘└───┬──┘
┌─┴─┐┌───┴──┐
│报 告 ││ 分离培养 │
└─┬─┘└───┬──┘
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│增菌产毒培养 ││观察菌落性状，│
│30℃，5d │ │ 染色镜检 │
└─┬───┬┘ └───┬───┘
┌───┴─┐┌┴───┐ │
│毒素检测 ││培养检查│ │
│ │└────┘ │
└──┬──┘ │
└────┬─────┴┐
│报 告 │
└──────┘
(三注: ①报告(一):检样含有某型肉毒毒素。
②报告(二):检样含有某型肉毒梭菌。
③报告(三):由样品分离的菌株为某型肉毒梭菌。
如上所示,检样经均质处理后,及时接种培养,进行增菌、产毒,同时进行毒素检
测试验。毒素检测试验结果可证明检样中有无肉毒毒素以及有何型肉毒毒素存在
。
对增菌产毒培养物,一方面做一般的生长特性观察,同时检测肉毒毒素的产生情
况。所得结果可证明检样中有无肉毒梭菌以及有何型肉毒梭菌存在。
为其他特殊目的而欲获纯菌株,可用增菌产毒培养物进行分离培养,对所得纯菌
株进行形态、培养特性等观察及毒素检测,其结果可证明所得纯菌为何型肉毒梭菌。
6 操作步骤
6.1 肉毒毒素检测
液状检样可直接离心,固体或半流动检样须加适量(例如等量、倍量或5倍量、10倍
量)明胶磷酸盐缓冲液,浸泡、研碎,然后离心,取上清液进行检测。
另取一部分上清液,调pH6.2,每9份加10%胰酶(活力1:250)水溶液1份,混匀,经常轻轻
搅动,37℃作用60min,进行检测。
肉毒毒素检测以小白鼠腹腔注射法为标准方法。
6.1.1 检出试验:取上述离心上清液及其胰酶激活处理液分别注射小白鼠2只,每只
0.5mL,观察4d。注射液中若有肉毒毒素存在,小白鼠一般多在注射后24h内发病、死
亡。主要症状为竖毛、四肢瘫软,呼吸困难,呼吸呈风箱式,腰部凹陷,宛若蜂腰,最终
死于呼吸麻痹。
如遇小鼠猝死以至症状不明显时,则可将注射液做适当稀释,重做试验。
6.1.2 确证试验:不论上清液或其胰酶激活处理液,凡能致小鼠发病、死亡者,取样分
成3份进行试验,1份加等量多型混合肉毒抗毒诊断血清,混匀,37℃作用30min,1份加
等量明胶磷酸盐缓冲液,混匀,煮沸10min;1份加等量明胶磷酸盐缓冲液,混匀即可,不
做其他处理。3份混合液分别注射小白鼠各2只,每只0.5mL,观察4d,若注射加诊断血
清与煮沸加热的2份混合液的小白鼠均获保护存活,而唯有注射未经其他处理的混合
液的小白鼠以特有的症状死亡,则可判定检样中的肉毒毒素存在,必要时要进行毒力
测定及定型试验。
6.1.3 毒力测定:取已判定含有肉毒毒素的检样离心上清液,用明胶磷酸盐缓冲液做
成50倍、500倍及5000倍的稀释液,分别注射小白鼠各2只,每只0.5mL,观察4d。根据
动物死亡情况,计算检样所含肉毒毒素的大体毒力(MLD/mL或mLD/g)。例如:5倍、50
倍及500倍稀释致动物全部死亡,而注射5000倍稀释液的动物全部存活,则可大体判定
检样上清液所含毒素的毒力为1 000～10 000MLD/mL。
6.1.4 定型试验:按毒力测定结果,用明胶磷酸盐缓冲液将检样上清液稀释至所含毒素
的毒力大体在10～1 000MLD/mL的范围,分别与各单型肉毒抗诊断血清等量混匀,37℃
作用30min,各注射小鼠2只,每只0.5mL,观察4d。同时以明胶磷酸盐缓冲液代替诊断血
清,与稀释毒素液等量混合作为对照。能保护动物免于发病、死亡的诊断血清型即为
检样所含肉毒毒素的型别。
注:① 未经胰酶激活处理的检样的毒素检出试验或确证试验 若为阳性结果,则胰
酶激活处理液可省略毒力测定及定型试验。
② 为争取时间尽快得出结果,毒素检测的各项试验也可同时进行。
③ 根据具体条件和可能性,定型试验可酌情先省略C、D、F及G型。
④ 进行确证及定型等中和试验时,检样的稀释应参照所用肉毒诊断血清的效价。
⑤ 试验动物的观察可按阳性结果的出现随时结束,以缩短观察时间;唯有出现阴性结果时, 应保留充分的观察时间。
6.2 肉毒梭菌检出(增菌产毒培养试验)
取庖肉培养基3支,煮沸10～15min,做如下处理:
第一支:急速冷却,接种检样均质液1～2mL;
第二支:冷却至60℃,接种检样,继续于60℃保温10min,急速冷却;
第三支:接种检样,继续煮沸加热10min,急速冷却。
以上接种物于30℃培养5d,若无生长,可再培养10d。培养到期,若有生长,取培养液
离心,以其上清液进行毒素检测试验,方法同4.1,阳性结果证明检样中有肉毒梭菌存
在。
6.3 分离培养
选取经毒素检测试验证实含有肉毒梭菌的前述增菌产毒培养物(必要时可重复一
次适宜的加热处理)接种卵黄琼脂平板,35℃厌氧培养48h。肉毒梭菌在卵黄琼脂平板
上生长时,菌落及周围培养基表面覆盖着特有的虹彩样(或珍珠层样)薄层,但G型菌无
此现象。
根据菌落形态及菌体形态挑取可疑菌落,接种庖肉培养基,于30℃培养5d,进行毒素
检测及培养特性检查确证试验。
6,3,1 毒素检测:试验方法同4.1。
6.3.2 培养特性检查:接种卵黄琼脂平板,分成2份,分别在35℃的需氧和厌氧条件下培
养48h,观察生长情况及菌落形态。肉毒梭菌只有在厌氧菌条件下才能在卵黄琼脂平
板上生长并形成具有上述特征的菌落,而在需氧条件下则不生长。
注:为检出蜂蜜中存在的肉毒梭菌, 蜂蜜检样需预温37℃(流质蜂蜜),或52～53℃(晶质蜂蜜),充
分搅拌后立即称取20g,溶于100mL灭菌蒸馏水(37℃或52～53℃),搅拌稀释,以
8 000～10000r/min
离心30min(20℃),沉淀,加灭菌蒸馏水1mL,充分摇匀,等分各半,接种庖肉培养基
(8～10mL)各1支,
分别在30℃及37℃下厌氧培养7d,按6.2进行肉毒毒素检测。
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附加说明:
本标准由卫生部卫生监督司提出。
本标准由卫生部兰州生物制品研究所负责起草。
本标准主要起草人王成怀。
本标准由卫生部委托技术归口单位卫生部食品卫生监督检验所负责解释。
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中华人民共和国卫生部1994-03-18批准 1994-09-01实施